Application of stromal-vascular fraction of adipose tissue and platelet-rich plasma in the treatment of peripheral nerve injuries: possibilities and prospects(a review)
NEW TECHNOLOGIES IN MEDICINE
Abstract
Peripheral nerve injuries are often accompanied by failure of spontaneous regeneration, leading to severe sensory and motor impairments, chronic pain, and, consequently, a reduced quality of life. Successful restoration of peripheral nerve structure and function depends on a number of factors, with maintaining a neurotrophic environment at the site of injury being critical. The ability of cellular biological products to provide trophic support and activate reparative processes, as well as their immunomodulatory effects constitute a key driver of the intense interest of neurology researchers. This review examines current understanding of the pathophysiology of peripheral nerve injury and the factors influencing its recovery. The results of current experimental and clinical studies on the use of platelet-rich plasma and stromal vascular fraction of adipose tissue for the treatment of peripheral nerve injuries are presented. This article describes current information on the biological properties, primary mechanisms of action and therapeutic potential of stromal vascular fraction and platelet-rich plasma, highlighting the advantages of using these biologically active cellular products in regenerative neurology as a means of locally delivering trophic factors. The potential for combined use of stromal vascular fraction and platelet-rich plasma in traumatic peripheral neuropathy is highlighted, as is the need for experimental research in this area.
References
1. Modrak M., Talukder M.A.H., Gurgenashvili K., Noble M., Elfar J.C. Peripheral nerve injury and myelination: Potential therapeutic strategies. J Neurosci Res. 2020;98(5):780–795. https://doi.org/10.1002/jnr.24538.
2. Zhang X., Kuang Q., Xu J., Lin Q., Chi H., Yu D. MSC-based cell therapy in neurological diseases: a concise review of the literature in pre-clinical and clinical research. Biomolecules. 2024;14(5):538. https://doi.org/10.3390/biom14050538.
3. Aldali F., Deng C., Nie M., Chen H. Advances in therapies using mesenchymal stem cells and their exosomes for treatment of peripheral nerve injury: state of the art and future perspectives. Neural Regen Res. 2025;20(11):3151–3171. https://doi.org/10.4103/NRR.NRR-D-24-00235.
4. Павлов В.Н., Казихинуров А.А., Казихинуров Р.А., Агавердиев М.А., Гареев И.Ф., Бейлерли О.А., Мазоров Б.З. Стромально-васкулярная фракция: биология и потенциальное применение. Креативная хирургия и онкология. 2021;11(1):92–99. https://doi.org/10.24060/2076-3093-2021-11-1-92-99.
5. Araújo R.S., Mussalem M.G.V.B., Carrijo G.S., Bani J.V.F., Ferreira L.M. Adipose tissue derivatives in peripheral nerve regeneration after transection: a systematic review. Bioengineering (Basel). 2024;11(7):697. https://doi.org/10.3390/bioengineering11070697.
6. Яриков А.В., Байтингер А.В., Тутуров А.О., Евграфов Д.П., Байтингер В.Ф., Селянинов К.В. и др. Повреждения периферических нервов, история развития лечения, консервативное, интервенционное и хирургическое лечение. Бюллетень науки и практики. 2025;11(1):146–184. https://doi.org/10.33619/2414-2948/110/18.
7. Miskiewicz M., Hakimi A., Ling K., Tesoriero J., Komatsu D., Wang E. Epidemiology, risk factor, and economic analysis of peripheral nerve injury following distal radius fractures. Eur J Orthop Surg Traumatol. 2025;35(1):292. https://doi.org/10.1007/s00590-025-04396-0.
8. Yang J., Zhang S., Li X., Chen Z., Xu J., Chen J. et al. Convergent and divergent transcriptional reprogramming of motor and sensory neurons underlying response to peripheral nerve injury. J Adv Res. 2025;72:135–150. https://doi.org/10.1016/j.jare.2024.07.008.
9. Hostiuc S., Ciobanu O.M., Popa E., Căținaș R., Ionescu-Mihăiță A.M., Sima A. et al. Clinical anatomy and diagnostic challenges in peripheral nerve trauma for the forensic physician. Diagnostics (Basel). 2025;15(13):1597. https://doi.org/10.3390/diagnostics15131597.
10. Kaya Y., Sarikcioglu L. Sir Herbert Seddon (1903–1977) and his classification scheme for peripheral nerve injury. Childs Nerv Syst. 2015;31(2):177–180. https://doi.org/10.1007/s00381-014-2560-y.
11. Lopes B., Sousa P., Alvites R., Branquinho M., Sousa A.C., Mendonça C. et al. Peripheral nerve injury treatments and advances: one health perspective. Int J Mol Sci. 2022;23(2):918. https://doi.org/10.3390/ijms23020918.
12. Wu S., Shen W., Ge X., Ao F., Zheng Y., Wang Y. et al. Advances in large gap peripheral nerve injury repair and regeneration with bridging nerve guidance conduits. Macromol Biosci. 2023;23(10):2300078. https://doi.org/10.1002/mabi.202300078.
13. Fakhr M.J., Kavakebian F., Ababzadeh S., Rezapour A. Challenges and advances in peripheral nerve tissue engineering critical factors affecting nerve regeneration. J Tissue Eng Regen Med. 2024;2024(1):8868411. https://doi.org/10.1155/2024/8868411.
14. Satria O., Aprilya D. Systematic review of nerve adhesion barriers for peripheral nerve regeneration and functional recovery. Orthop Res Rev. 2025;17:401–412. https://doi.org/10.2147/ORR.S506375
15. Vijayavenkataraman S. Nerve guide conduits for peripheral nerve injury repair: A review on design, materials and fabrication methods. Acta Biomater. 2020;106:54–69. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2020.02.003
16. Wan T., Zhang F.S., Qin M.Y., Jiang H.R., Zhang M., Qu Y. et al. Growth factors: Bioactive macromolecular drugs for peripheral nerve injury treatment — molecular mechanisms and delivery platforms. Biomed Pharmacother. 2024;170:116024. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2023.116024.
17. Arif F., Rahman M., Khan C. Adipose derived stem cells for the peripheral nerve regeneration: review of techniques and clinical implications. J Pak Med Assoc. 2023;73(Suppl 1):S148–S154. https://doi.org/10.47391/JPMA.AKUS-24.
18. Goncharov E.N., Koval O.A., Igorevich E.I., Encarnacion Ramirez M.J., Nurmukhametov R., Valentinovich K.K., Montemurro N. Analyzing the clinical potential of stromal vascular fraction: a comprehensive literature review. Medicina (Kaunas). 2024;60(2):221. https://doi.org/10.3390/medicina60020221.
19. Jovic D., Preradovic L., Kremenovic M., Jovic F., Antonic M., Aleksic Z., Ljubojevic V. Effect of donor site selection for fat grafting on the yield and viability of the stromal vascular fraction. Aesthet Surg J. 2023;43(9):NP704–NP712. https://doi.org/10.1093/asj/sjad184.
20. Gareev I., Beylerli O., Sufianov A., Pavlov V., Shi H. Stromal vascular fraction cell therapy: A promising therapeutic method for intracerebral hemorrhage. Brain Hemorrhages. 2025;6(3):110–120. https://doi.org/10.1016/j.hest.2025.01.002.
21. Анастасиева Е.А., Черданцева Л.А., Толстикова Т.Г., Кирилова И.А. Использование депротеинизированной костной ткани в качестве матрицы тканеинженерной конструкции: экспериментальное исследование. Травматология и ортопедия России. 2023;29(1):46–59. https://doi.org/10.17816/2511-2905-2016.
22. Алексеев A.A., Филимонов К.А., Астрелина T.A., Кобзева И.В., Бобровников А.Э., Хромина С.С. и др. Комбинированное применение аутологичных клеток стромально-васкулярной фракции жировой ткани при аутодермопластике обширных глубоких ожогов. Клиническая и экспериментальная хирургия. 2025;13(3(49)):7–15. https://doi.org/10.33029/2308-1198-2025-13-3-7-15.
23. Tang Q., Zhao X.S., Guo A., Cui R.T., Song H.L., Qi Z.Y. et al. Therapeutic applications of adipose-derived stromal vascular fractions in osteoarthritis. World J Stem Cells. 2022;14(10):744–755. https://doi.org/10.4252/wjsc.v14.i10.744.
24. Santos-De-La-Mata Á., Esteban P.F., Martínez-Torija M., Paniagua-Torija B., Espino-Rodríguez F.J., Beltrán-Camacho L. et al. Vasculogenic potential of adipose tissue derived stem cells from patients with chronic spinal cord injury and pressure injuries. Angiogenesis. 2025;28(4):48. https://doi.org/10.1007/s10456-025-10002-y.
25. Ertlen C., Seblani M., Bonnet M., Brezun J.M., Coyle T., Sabatier F. et al. Efficacy of the immediate adipose-derived stromal vascular fraction autograft on functional sensorimotor recovery after spinal cord contusion in rats. Stem Cell Res Ther. 2024;15(1):29. https://doi.org/10.1186/s13287-024-03645-z.
26. Schilling B.K., Baker J.S., Komatsu C., Turer D.M., Bengur F.B., Nerone W.V. et al. Intramuscular nanofat injection promotes inflammation-induced gastrocnemius regeneration in a syngeneic rat sciatic nerve injury model. Plast Reconstr Surg. 2023;151(6):947e–958e. https://doi.org/10.1097/PRS.0000000000010115.
27. Илюнина О.О., Зюлькина Л.А., Щетинин В.В., Шастин Е.Н. Обогащенная тромбоцитами плазма в стоматологии: свойства, применение, протоколы приготовления (обзор литературы). Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки. 2025;(2(74)):12–28. https://doi.org/10.21685/20723032-2025-2-2.
28. Rath M., Spinnen J., Kuhrt L.D., Priglinger E., Seika P., Runge D. et al. Platelet-rich plasma — a comprehensive review of isolation, activation, and application. Acta Biomaterialia. 2025;204:52–75. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2025.07.050.
29. Zhang Z., Liu P., Xue X., Zhang Z., Wang L., Jiang Y. et al. The role of platelet-rich plasma in biomedicine: A comprehensive overview. i Science. 2025;28(2):111705. https://doi.org/10.1016/j.isci.2024.111705.
30. Чернуха Т.Н., Потапнев М.П., Линник О.В., Асаевич В.И. Плазма, обогащенная растворимыми факторами тромбоцитов: перспективы в терапии заболеваний периферической нервной системы. Обзор. Коморбидная Неврология. 2025;2(4):20–28. https://doi.org/10.62505/3034-185x-2025-2-4-20-28.
31. Минина А.О., Бокарев А.В., Холодный Р.Д. Сравнительная способность тромбоцитов, выделенных из образцов крови, стабилизированных цитратом натрия, ЭДТА или гепарином, к агрегации в ответ на активацию некоторыми агонистами. Международный вестник ветеринарии. 2025;(2):364–375. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2025.2.364.
32. Walsh M.R., Nelson B.J., Braman J.P., Yonke B., Obermeier M., Raja A., Reams M. Platelet-rich plasma in fibrin matrix to augment rotator cuff repair: a prospective, single-blinded, randomized study with 2-year follow-up. J Shoulder Elbow Surg. 2018;27(9):1553–1563. https://doi.org/10.1016/j.jse.2018.05.003.
33. Uçar Ö, Çelik S. Comparison of platelet-rich plasma gel in the care of the pressure ulcers with the dressing with serum physiology in terms of healing process and dressing costs. Int Wound J. 2020;17(3):831–841. https://doi.org/10.1111/iwj.13344.
34. Hui Q., Chang P., Guo B., Zhang Y., Tao K. The clinical efficacy of autologous platelet-rich plasma combined with ultra-pulsed fractional CO2 laser therapy for facial rejuvenation. Rejuvenation Res. 2017;20(1):25–31. https://doi.org/10.1089/rej.2016.1823.
35. El Sheshtawy A.S., Nazzal H., El Shahawy O.I, El Baz A.A., Ismail S.M., Kang J., Ezzat K.M. The effect of platelet-rich plasma as a scaffold in regeneration/revitalization endodontics of immature permanent teeth assessed using 2-dimensional radiographs and cone beam computed tomography: a randomized controlled trial. Int Endod J. 2020;53(7):905–921. https://doi.org/10.1111/iej.13303.
36. Wang S., Liu Z., Wang J., Cheng L., Hu J., Tang J. Platelet-rich plasma (PRP) in nerve repair. Regen Ther. 2024;27:244–250. https://doi.org/10.1016/j.reth.2024.03.017.
37. Потапнев М.П., Загородный Г.М., Кривенко С.И., Богдан В.Г., Свирский А.О., Ясюкевич А.C. и др. Современные аспекты применения плазмы, обогащенной растворимыми факторами тромбоцитов, в лечении травм и заболеваний опорно-двигательного аппарата. Спортивная медицина: наука и практика. 2020;9(4):33–45. https://doi.org/10.17238/ISSN2223-2524.2019.4.33.
38. Третьяков А.А., Зиновкин Д.А., Карпенко Ф.Н., Потапнев М.П., Николаев В.И., Пранджол М.З.И. Патоморфологическая оценка эффективности внутрисуставного применения растворимых факторов тромбоцитов для лечения экспериментального остеоартрита. Гений ортопедии. 2024;30(1):90–98. https://doi.org/10.18019/1028-4427-2024-30-1-90-98.
39. Богдан В.Г., Янушко В.Я., Варикаш Д.В., Потапнев М.П., Кривенко С.И. Клиническая эффективность применения аутологичной плазмы, обогащенной ростовыми факторами тромбоцитов, в комплексном лечении пациентов с хронической ишемией нижних конечностей. Хирургия Восточная Европа. 2025;14(4):549–563. https://doi.org/10.34883/PI.2025.14.4.016.
40. Богдан В.Г., Федоров К.А., Трухан А.П. Эффективность клинического применения комплексного реконструктивно-регенеративного метода в лечении пациентов с обширными дефектами мягких тканей дистальных отделов нижних конечностей. Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2025;23(5):463–471. https://doi.org/10.25298/2221-8785-2025-23-5-463-471.
41. Куделич О.А., Кондратенко Г.Г., Летковская Т.А., Степуро О.А., Потапнев М.П., Неровня А.М. Влияние мезенхимальных стромальных клеток, их микровезикул и плазмы, обогащенной растворимыми факторами тромбоцитов, на патологические изменения в ткани поджелудочной железы при остром некротизирующем панкреатите у крыс. Трансплантология. 2025;17(2):167–183. https://doi.org/10.23873/2074-0506-2025-17-2-167-183.
42. Дерий Э.К., Зиновьев Е.В., Костяков Д.В., Пятаков С.Н., Мануковский В.А. Эффективность применения аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами, и стромально-васкулярной клеточной фракции жировой ткани при аутодермопластике. Инновационная медицина Кубани. 2023;(3(31)):87–93. https://doi.org/10.35401/2541-9897-2023-26-3-87-93.
43. Schwitzguebel A., Cadavid D.A.R., Silva T.D., Decavel P., Benaim C. Effectiveness of stromal vascular fraction (SVF) and platelet-rich plasma (PRP) in patients with knee osteoarthritis: protocol for a phase 3, prospective, randomized, controlled, multicenter study (SPOST Study). JMIR Res Protoc. 2025;14(1):e62659. https://doi.org/10.2196/62659.
44. Pensato R., Al-Amer R., La Padula S. Efficacy and safety of transplantation of autologous fat, platelet-rich plasma (PRP) and stromal vascular fraction (SVF) in the treatment of acne scar: systematic review and meta-analysis. Aesth Plast Surg. 2024;48(13): 2592–2593. https://doi.org/10.1007/s00266-023-03477-x.
45. Zhang Y., Yi D., Hong Q., Liu C., Chi K., Liu J. et al. Platelet-rich plasma-derived exosomes enhance mesenchymal stem cell paracrine function and nerve regeneration potential. Biochem Biophys Res Commun. 2024;699:149496. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2024.149496.
46. Богдан В.Г., Багатка С.С., Юркевич М.Ю., Зафранская М.М., Гаин Ю.М. Влияние обогащенной тромбоцитами плазмы на жизнеспособность, скорость роста, морфо-фенотипические и секреторные особенности мезенхимальных стромальных клеток жировой ткани человека. Медицинский журнал. 2011;(1(35)):27–29. EDN: RSKLEJ.
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
